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细胞凋亡的检测方法
放大字体  缩小字体 发布日期:2015-12-18  浏览次数:117
   细胞凋亡的细胞化学测定细胞,凋亡的细胞化学测定包括细胞表面(细胞膜)的结构和通透性改变的测定和细胞核DNA改变的测定。根据应用的范围,又可分为细胞群休和单个细胞测定两种,以下仅介绍其中几种较为常用的方法。
碘化丙啶(propidium iodide,PI)检测
    正常细胞的细胞膜磷脂分布是不对称的,磷脂酰丝氨酸(phosphatidylserine,PS)位于细胞膜内侧,在细胞凋亡时转至细胞膜外表面,这一改变被认为是特导性的,并且可作为凋亡细胞表面改变的标记。PS表面化发生于凋早期,其机制尚不清,可能是一种导致机体吞噬凋亡细胞的信号。膜联蛋白V是Ca2+依赖的磷脂结合蛋白,对PS具有高度亲和力,荧光标记的膜联蛋白V与细胞表现PS结合,再用显微镜或流式细胞仪进行检测,可以观察凋亡过程中细胞膜PS的表面化。结合PI染色进行双参数检测尚能区分正常细胞、早期凋亡细胞、晚期凋亡细胞及坏死细胞。正常细胞膜联蛋白V(-)PI(-),早期凋亡细胞膜联蛋白V(+)PI(-),晚期凋亡细胞和坏死细胞膜联蛋白V(+)PI(+)。有研究表明膜联蛋白V标记仅有不到三分之一的凋亡细胞出现阳性标记,其原因尚不明。同时需注意度的是凋亡后期溶解阶段,细胞碎片也可出现明显的阳性着色。
    检测方法:1×106细胞/ml细胞悬液,先后用膜联蛋白V--FITC及PI染色,流式细胞仪分析,获得由四个象限组成的细胞直方图(cytogram),每个象限的细胞数目就是在检测细胞总数在所点的组份。左下象限代表正常细胞(An-PI-),右下象限代表早期凋亡细胞(An+PI-),右上象限代表晚期凋亡细胞和坏死细胞(An+PI+),左上象限代表细胞收集过程中出现的损伤细胞(An-PI+)。用生物素标记膜联蛋白V还可以作体内试验。将生物素标记膜联蛋白V注射小鼠体内,30分钟后处死,迅速取出要研究的组织置于甲醛内固定,然后,常规石蜡切片,脱蜡、水化,用亲和素标记的过氧化物酶程程序孵育,DAB显色,光镜下观察凋亡细胞。
DNA裂解的原位检测
    在细胞水平检测DNA裂解的原位标记技术已越来越多地被用于组织切片和培养细胞,细胞凋亡时,由于DNA的裂解,形成单或寡核小体的双链相对分子质量小的片段及在相对分子质量大的DNA上形成单的继裂(缺口,nick)。此类断裂可用生物素、地高*或荧光素标记的核苷酸在3`-OH端予以显示。通常采用的酶是DNA聚合酶I或未端脱氧核苷酸转移酶(TdT),前者使核苷酸结合于缺口,需要模板存在,标记方法通常被称为“原位缺口平移”(insitu nick translation,ISNT),后者使核苷酸在双链的断端延伸,不需要模板的存在,其方法被称为未端记(end labeling)、加尾法(tailing reaction)或TUNEL(TdT-mediated dUTP nick end labeling)。上述方法,尤其是TUNEL的应用已很广泛,其优点是可用于原位标记,可用于病理组织,并可进行定量分析。值得注意的是坏死期由于内源性核酸内切酶和蛋白质酶的何等用,DNA被切割成大小不等的片段,也可出现 阳性反应。组织或细胞外理不当时可出现假阳性。因而,TUNEL等方法对凋亡细胞的标记是选择性的。而不是特异性的,TUNEL或其他DNA裂解原位标记的分析应结合阳性细胞的形态,尤其是核的特征,细胞的分布和有无炎症反应,除外非凋亡的阳性反应。
    检测方法:石蜡切片常规脱蜡、水化,蛋白质酶K消化,TdT酶和核苷酸混合液孵育,显色(辣根过氧化物酶标记可用DAB显色,碱性磷酸酶标可用NBT+BCIP显色),复染,脱水,封片。凋亡细胞核呈现蓝色(NBT+BCIP显色)或者棕黄色(DAB显色)。  

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